齐藤隐球酵母SHMCCD55906-博戈里亚假菌丝酵母SHMCCD53615=ATCC18809=BCRC21521=CBS4101=DSM70872=NBRC1966=NRRLY-12675-人工脑脊液(NMDGaCSF)

在大肠杆菌中，RNase III的活性对于维持细胞内RNA代谢的平衡至关重要。

Tris-乙酸电泳缓冲液(50×TAE, RNase free)是一种专为RNA电泳设计的高浓度缓冲液，经过RNase-free处理，能够有效避免RNA降解，确保电泳结果的可靠性。产品特性成分：主要由2M Tris-acetate、50 mM EDTA和DEPC处理水组成。工作液浓度：稀释50倍后的1×TAE工作液含有40 mM Tris-acetate和1 mM EDTA，pH值约为8.0。 无RNase污染：经过DEPC处理，确保无RNase污染，适用于RNA电泳。稳定性高：室温保存，有效期长达12个月。使用方法稀释：将50×TAE缓冲液用DEPC处理水稀释50倍，制备1×工作液。电泳操作：将稀释后的1×TAE缓冲液加入电泳槽中，确保缓冲液完全覆盖凝胶。加样后开始电泳，电泳条件根据实验需求调整。染色与观察：电泳结束后，使用合适的RNA染料（如EB或Goldview）染色。在紫外灯下观察RNA条带。保存与注意事项保存条件：室温保存，开封后建议尽快使用。避免RNase污染：使用时需佩戴无RNase手套，避免使用可能含有RNase的耗材。

T4 DNA聚合酶是一种来源于T4噬菌体的酶，具有独特的酶活性和广泛的应用价值。

在分子生物学实验中，PCR技术是不可或缺的工具，而Hot-Start Taq DNA Polymerase则是这一技术中的一颗璀璨明珠。它以其独特的机制和卓越的性能，为PCR反应的精准性和特异性提供了强有力的保障。 传统的Taq DNA聚合酶在室温下就具有活性，这意味着在PCR反应开始之前，引物可能会与模板发生非特异性结合，导致背景产物的产生，从而影响实验结果的准确性。而Hot-Start Taq DNA Polymerase通过特殊的化学修饰或物理方法，解决了这一问题。它在室温下处于“关闭”状态，只有在高温下才会被激活，从而有效避免了非特异性扩增的发生。 Hot-Start Taq DNA聚合酶的激活机制通常基于两种方式。一种是通过化学修饰，如在酶的活性位点引入可逆的化学基团，这些基团在高温下被去除，从而恢复酶的活性。另一种是通过物理方法，如将酶与抗体结合，抗体在高温下变性失活，从而释放出具有活性的Taq酶。无论哪种方式，其核心目标都是确保Taq酶在PCR反应的变性阶段才开始发挥作用。

Hot-Start Taq DNA Polymerase是一种经过优化的热启动DNA聚合酶

Tris-硼酸电泳缓冲液(5×TBE)是一种广泛应用于核酸电泳的高浓度缓冲液，特别适用于DNA和RNA的聚丙烯酰胺凝胶电泳。它由三羟甲基氨基甲烷（Tris）、硼酸和乙二胺四乙酸（EDTA）组成，能够为核酸电泳提供稳定的pH环境和良好的导电性。产品特性成分：主要由450 mM Tris-硼酸和10 mM EDTA组成。工作液浓度：稀释5倍后得到的0.5×TBE工作液含有45 mM Tris-硼酸和1 mM EDTA，pH值约为8.0。缓冲能力强：适合较长时间电泳，能够维持稳定的pH值，不易出现pH波动。高分辨率：特别适用于分离小于1 kb的DNA片段，能够提供清晰的条带。稳定性高：室温保存，有效期长达12个月。使用方法稀释：将5×TBE缓冲液用蒸馏水或去离子水稀释5倍，制备0.5×工作液。电泳操作：将稀释后的0.5×TBE缓冲液加入电泳槽中，确保缓冲液完全覆盖凝胶。加样后开始电泳，电泳条件根据实验需求调整。染色与观察：电泳结束后，使用合适的核酸染料（如EB或Goldview）染色。在紫外灯下观察核酸条带。

它主要作用于具有黏性末端的DNA片段，但连接平末端的效率较低。

在分子生物学研究中，长片段DNA扩增是许多实验的关键步骤，但传统PCR方法在扩增较长片段时常常面临效率低、特异性差等问题。Ultra-Long Master Mix (2×) (Without Dye)的出现，为这一难题提供了高效的解决方案。 Ultra-Long Master Mix (2×) (Without Dye)是一种专为长片段DNA扩增设计的预混反应体系。它以Ultra-Long DNA Polymerase为核心，这种聚合酶融合了多种酶的特性，能够在单次反应中高效扩增长达40 kb甚至更长的DNA片段。这种能力使其在基因组学研究、全基因合成以及复杂基因组区域的分析中具有无可比拟的优势。 该Master Mix的“2×”浓度设计意味着实验人员只需将模板DNA、引物和水加入其中，即可快速配制好反应体系。这种预混液不仅简化了操作流程，还减少了人为误差，确保了反应体系的均一性和稳定性。此外，无染料配方为后续实验提供了更大的灵活性。实验人员可以根据需要选择是否添加染料，或者直接用于下游应用，如克隆、测序或无染料的凝胶电泳分析。

上样与电泳：混合均匀后，将样品加入琼脂糖凝胶的加样孔中，进行电泳。

Tris-硼酸电泳缓冲液(5×TBE, RNase free)是一种专为RNA电泳设计的高浓度缓冲液，经过RNase-free处理，能够有效避免RNA降解，确保电泳结果的可靠性。产品特性 成分：主要由450 mM Tris-硼酸、10 mM EDTA和DEPC处理水组成。工作液浓度：稀释5倍后得到的0.5×TBE工作液含有45 mM Tris-硼酸和1 mM EDTA，pH值约为8.0。 无RNase污染：经过DEPC处理，确保无RNase污染，适用于RNA电泳。稳定性高：室温保存，有效期长达12个月。使用方法稀释：将5×TBE缓冲液用DEPC处理水稀释5倍，制备0.5×工作液。例如：取10 mL 5×TBE，加入90 mL DEPC处理水，混匀即可。电泳操作：将稀释后的0.5×TBE缓冲液加入电泳槽中，确保缓冲液完全覆盖凝胶。加样后开始电泳，电泳条件根据实验需求调整。染色与观察：电泳结束后，使用合适的RNA染料（如EB或Goldview）染色。在紫外灯下观察RNA条带。注意事项 沉淀处理：如果出现沉淀，可置于37℃水浴中使其溶解，不影响使用。

二甲苯青和溴酚蓝的迁移速度不同，分别对应不同大小的 DNA 片段，可提供更准确的电泳进程指示。

2×TBE-Urea 上样缓冲液是一种专门用于变性核酸电泳的试剂，能够有效解除核酸的二级结构，使其保持单链构型，从而实现更清晰的电泳分离效果。组成成分该缓冲液的主要成分包括：尿素（Urea）：用于解除核酸的二级结构，保持核酸的单链状态。 溴酚蓝（Bromophenol Blue） 和 二甲苯青（Xylene Cyanol FF）：作为示踪染料用于观察电泳的进程。Tris、硼酸和 EDTA：维持电泳过程中的缓冲体系，确保电泳条件的稳定。聚蔗糖（Ficoll）：增加样品密度，帮助样品沉入凝胶孔中。使用方法样品处理：将 2×TBE-Urea 上样缓冲液与待测核酸样品按 1:1 比例混合70℃加热 3-5 分钟，使核酸充分变性，之后立即置于冰上冷却。上样与电泳：将处理后的样品加入变性聚丙烯酰胺凝胶的加样孔中，进行电泳。应用场景2×TBE-Urea 上样缓冲液主要用于单链 DNA（ssDNA）和 RNA 的变性凝胶电泳，广泛应用于基因分型检测（如 SSR 标记、AFLP、RFLP 等）。它不适用于非变性凝胶电泳或蛋白电泳。

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